Frontiere Proteină organizatoare mitotice-fus MztA mediază semnalizarea septării prin suprimarea

Ciuperci și interacțiunile lor

Editat de
Hector Mora Montes

Universitatea din Guanajuato, Mexic

Revizuite de
Praveen R. Juvvadi

Universitatea Duke, Statele Unite

Frank Ebel

Universitatea Ludwig Maximilian din München, Germania

Afilierile editorului și ale recenzenților sunt cele mai recente oferite în profilurile lor de cercetare Loop și este posibil să nu reflecte situația lor în momentul examinării.

organizatoare

  • Descărcați articolul
    • Descărcați PDF
    • ReadCube
    • EPUB
    • XML (NLM)
    • Suplimentar
      Material
  • Citarea exportului
    • Notă finală
    • Manager de referință
    • Fișier TEXT simplu
    • BibTex
DISTRIBUIE PE

Cercetare originală ARTICOL

  • Laboratorul cheie Jiangsu pentru microbi și genomică funcțională, Centrul de cercetare tehnologică și inginerie Jiangsu pentru microbiologie, Colegiul de Științe ale vieții, Universitatea normală Nanjing, Nanjing, China

Momentul adecvat și poziționarea citokinezei/septării este crucială pentru creșterea și conidierea hifalului în Aspergillus nidulans. Componentele rețelei de inițiere a septării (SIN) sunt o cascadă de semnalizare localizată a corpului polului fusului (SPB) și complexul terminal de kinază SidB-MobA, care trebuie să se localizeze pe SPB în această cale pentru a declanșa septarea/citokineza. Subunitatea de reglementare a fosfatazei PP2A-ParA a fost identificată ca fiind un regulator negativ capabil să inactiveze SIN. Cu toate acestea, se știe puțin despre modul în care ParA reglează calea SIN și dacă ParA reglează procesul de formare a septului prin afectarea proteinelor SIN localizate SPB. În acest studiu, prin RNA-Seq și abordări genetice, am identificat un nou regulator de septare pozitiv, o proteină putoasă de organizare a fusului mitotic și un omolog Mzt1 de drojdie MztA, care acționează antagonic față de PP2A-ParA pentru a regla coordonat proteinele SIN localizate SPB SidB-MobA în timpul septării. Aceste descoperiri implică faptul că regulatorii, fosfataza PP2A-ParA și MztA contracarează funcția de septare probabil prin echilibrarea polimerizării și depolimerizării microtubulilor la SPB.

Introducere

În plus, SPB servește și ca centru de organizare a microtubulilor (MTOC), pentru a însămânța polimerizarea fusului mitotic și pentru a furniza mașini nucleatoare pentru reglarea atașării și dinamicii microtubulilor și stabilirea polarității microtubulilor (Zekert și colab., 2010; Takeshita și Fischer, 2011; Kilmartin, 2014; Wieczorek și colab., 2015). Regulatorul principal al nucleației microtubulilor (MT) este complexul inelar γ-tubulină (γ-TuRC), care acoperă capetele minus ale MT și facilitează nucleația direcțională a MT. Astfel, MT-urile sunt polimeri dinamici care tranzitează între polimerizare și depolimerizare (Xiong și Oakley, 2009; Suri și colab., 2014; Walia și colab., 2014). Mai mult, semnalele care transmit proteine ​​SIN localizate SPB prin cascadă pentru a declanșa citokineza au nevoie de control spațial și temporal al evenimentelor de restructurare celulară dependente de MT (Robinson și Spudich, 2004; Rankin și Wordeman, 2010; Zhou și colab., 2010; Ngo și colab. ., 2016). În țesutul uman, o proteină numită proteină organizatoare a fusului mitotic (MOZART1) care interacționează cu γ-TuRC a fost identificată pentru a promova polimerizarea microtubulului și apoi a da naștere la microtubuli ramificați (Hutchins și colab., 2010; Teixidó-Travesa și colab., 2010; Cukier și colab., 2017). Cu toate acestea, cunoașterea dacă regulatorul principal γ -TuRC al nucleației MT afectează citokineza este încă limitată.

În acest studiu, prin RNA-Seq și abordări genetice, am identificat un nou regulator de septare pozitiv, MztA, care acționează antagonic față de ParA pentru a regla coordonat proteinele SIN localizate SPB SidB-MobA în timpul septării în ciuperca filamentoasă. A. nidulans.

Materiale și metode

Condiții de tulpini, media și cultură

O lista de A. nidulans tulpinile și oligonucleotidele utilizate în acest studiu sunt furnizate în tabelele 1, 2. YAG (5 g/L extract de drojdie + 1 mL/L oligoelement + 20 g/l glucoză), YUU (YAG + 1,2 g/L uridină + 1,1 g/L Uracil), MMPGR (50 mL/L Sare + 10 mL/L Glicerol + 0,5 mg/L Piridoxină + 2,5 mg/L Riboflavină + 1 mL/L Oligoelement), MMPGRTUU (MMPGR + 1,2 g/L Uridină + 1,1 g/L Uracil + 11,9 g/L Treonină) și MMPPGRTUU (MMPGRUU cu acid p-aminobenzoic 100 mM). Aceste medii au fost descrise în lucrări anterioare (Gupta și colab., 1976; Käfer, 1977). Condiții de creștere, încrucișări și condiții de inducție pentru alcA(Expresia condusă a fost așa cum s-a descris anterior (Liu și colab., 2003). Supraexprimarea genelor marcate sub controlul alcA promotorii au fost induși cu treonină (Zhong și colab., 2014). Au fost utilizate proceduri standard de transformare a ADN-ului A. nidulans (Osmani și colab., 1988).

tabelul 1. Aspergillus nidulans tulpini utilizate în acest studiu.